СЕЛЬСКОХОЗЯЙСТВЕННАЯ БИОЛОГИЯ, 2008, № 2, 26-30

ДНК-технологии в генетике и селекции

УДК 636.2:575.113

Построение контига геномных клонов кластера казеиновых генов крупного рогатого скота

К.А. Фомичев, Т. Малевски, С. Камински, А.Л. Сазанова, А.А. Сазанов

Проводили построение контига кластера казеиновых генов крупного рогатого скота в форме перекрывающихся BAC-клонов. Посредством скрининга гридированной BAC-библиотеки CHORI-240, содержащей 6,1 геномного эквивалента крупного рогатого скота, с использованием в качестве ДНК-зондов фрагментов генов CSN1S1 и CSN3 выявлены 17 протяженных геномных клонов со средним размером вставки 180 т.п.н. Методом ПЦР с праймерами, специфическими для генов, входящих в состав кластера, показано, что клоны CH240-130F23 и CH240-035O12 содержат гены CSN1S1, CSN1S2, CSN2, STATH и CSN3 и еще пять BAC-клонов содержат гены CSN2, STATH, CSN1S2 и CSN3. То есть все известные гены кластера представлены в контиге из семи полученных геномных клонов.

Ключевые слова: казеиновые гены, регуляторные элементы, протяженные геномные клоны, крупный рогатый скот.

Key words: casein genes, regulatory elements, large insert clones, cattle.

Нуклеотидные последовательности кластера казеиновых генов крупного рогатого скота (КРС) представляют интерес как с точки зрения возможности получения молекулярных маркеров для селекции на повышение молочной продуктивности, так и для создания высокоэффективных векторов для трансгенеза. Получение протяженных ДНК-клонов необходимо для сравнительного анализа кодирующих и регуляторных нуклеотидных последовательностей этого кластера.
Геномные библиотеки высокой плотности (гридированные геномные библиотеки) позволяют получать протяженные фрагменты ДНК, содержащие интересующую исследователей последовательность, и широко используются для анализа генома с применением различных подходов (http://www.ncbi.nlm.nih.gov). Для клонирования кластера казеиновых генов КРС мы выбрали гридированную BAC-библиотеку КРС CHORI-240 (средний размер вставки около 180 т.п.н., представлен эквивалент 6,1 генома) (http://bacpac.chori.org), реплика которой была приобретена в ресурсном центре Окландского детского госпиталя (Калифорния, США) (http://bacpac.chori.org).
Известно, что структура кластера казеиновых генов достаточно консервативна у разных видов млекопитающих (1-7). У человека, домовой мыши, крысы и КРС гены, входящие в состав этого кластера, расположены в одинаковом порядке: CSN1S1, CSN2, STATH, CSN1S2 и CSN3 (1, 4). Гены гистатинов 1 и 3(HTN1 и HTN3) расположены в пределах кластера казеиновых генов человека, домовой мыши и крысы, но у КРС обнаружены не были (http://www.ncbi.nlm.nih.gov/genome/guide/cow/index.html).
В настоящей работе нами проведено клонирование нуклеотидных последовательностей кластера казеиновых генов КРС в форме контига перекрывающихся BAC-клонов, содержащего 5'-фланкирующую область, а также гены CSN1S1, CSN1S2, CSN2, STATH и CSN3.
Методика. В качестве ДНК-зондов для скрининга использовали фрагменты последовательностей, содержащих 5'-фланкирующую область и экзон 1 гена CSN1S1 КРС (идентификационный номер X03590), экзон 4 и интрон 4 гена CSN3 КРС (идентификационный номер AJ841946).


Работа финансировалась грантом РФФИ ¹ 06-04-48031-а.

Последовательности праймеров:
CSN1S1f: 5'-GAAGAAGCAGCAAGCTGG-3'
CSN1S1r: 5'-TGCATGTTCTCATAATAACC-3'
CSN3f: 5'-GAAATCCCTACCATCAATACC-3'
CSN3r: 5'-CCATCTACGCTAGTTTAGATG-3'

При амплификации в полимеразной цепной реакции (ПЦР) с использованием в качестве матрицы тотальной ДНК быков черно-пестрой породы получили фрагменты длиной 319 п.н. для гена CSN1S1 и 270 п.н. для гена CSN3. Олигонуклеотидное мечение ДНК-зондов для выполнения скринга геномных библиотек проводили при помощи набора «Рандом-прайм» («Ферментас», Литва) с использованием 2 Mbq a-32P-dATP. Состав реакционной смеси: ДНК-матрица — 15-30 нг; раствор гексануклеотидов-праймеров (10 мкМ) — 2 мкл; бидистиллированная H2O — до 30 мкл. Смесь денатурировали нагреванием в термоблоке до 95 °С в течение 3-5 мин и быстро охлаждали на льду. Затем добавляли: ½10 буфер для кленовского фрагмента ДНК-полимеразы — 5 мкл; смесь dNTPs (кроме dATP) (0,1 мМ) — 10 мкл; a-32P-dATP — 2 Mbq; кленовский фрагмент ДНК-полимеразы I (10 ед/мкл) — 0,5 мкл; бидистиллированную H2O — до 50 мкл. Полученную смесь инкубировали в течение 1 ч при 37 °С, реакцию останавливали добавлением 1 мкл 0,5 М ЭДТА.
Предгибридизацию реплик гридированной библиотеки CHORI-240 Сегмент I (http://bacpac.chori.org/bovine240.htm) проводили инкубированием при 65 °С в растворе Church Buffer (0,342 М Na2HPO4, 0,158 М NaH2PO4, 7 %  SDS, 1 %  BSA,  pH 7,2) в течение 1 ч. Затем в раствор добавляли по 25 мкл меченого ДНК-зонда на библиотеку и инкубировали при той же температуре в течение 16 ч.
Отмывки проводили по следующей схеме: ½2 стандартный солевой раствор (SSC), 0,1 % SDS при 65 °С в течение 7 мин; ½2 SSC, 0,1 % SDS при комнатной температуре в течение 7 мин; ½0,5 SSC, 0,1 % SDS при комнатной температуре в течение 7 мин; ½0,1 SSC, 0,1 % SDS при комнатной температуре в течение 7 мин. Затем фильтры заворачивали в полиэтиленовую пленку Sarah Wrap и помещали в кассеты.
Анализ результатов гибридизации проводили методом авторадиографии на рентгеновской пленке Kodak или прямым сканированием на приборе Molecular Imager FX-Scan («Bio-Rad», США). Полученные изображения обрабатывали при помощи пакета компьютерных программ Quantity-One («Bio-Rad», США).
При проверке клонов на содержание нуклеотидных последовательностей кластера казеиновых генов КРС с помощью ПЦР матрицей служили последовательности геномных клонов (условия ПЦР и праймеры приведены в табл. 1). Длину вставки в BAC-клонах CH240-130F23 и CH240-035O12 определяли после обработки рестриктазой NotI и электрофоретического разделения фрагментов в агарозном геле.
Результаты. При гибридизации фильтров с последовательностями генов CSN1S1 и CSN3 было выявлено соответственно 6 и 11 BAC-клонов. Клоны CH240-130F23 и CH240-035O12, как оказалось, содержат гены CSN1S1, CSN1S2, CSN2, STATH и CSN3  (табл. 2). Пять клонов выявлены как позитивные при ПЦР-амплификации с использованием праймеров, специфических для генов CSN2, STATH, CSN1S2  и CSN3 (см. табл. 2).

 1. Праймеры и условия полимеразной цепной реакции (ПЦР) при проверке клонов на содержание последовательностей кластера казеиновых генов крупного рогатого скота

Локус

Идентификационный номер

Последовательность праймеров

Температура
гибридизации, °C

Длина фрагмента, п.н.

CSN1S1

X59856

f 5'-atccaaaggcttcaactgct-3'
r 5'-cctttgactcagtggccttt-3'

59

178

CSN1S2

M94327

f 5'-tctcctcctaggattggaaaga-3'
r 5'-ttgagacggtttgggaatct-3'

59

199

CSN2

X14711

f 5'-acagcctcccacaaaacatc-3'
r 5'-agactggagcagaggcagag-3'

60

224

STATH

AY154893

f 5'-tgaagaggaacaccggctta-3'
r 5'-atacagcaagagggcaggaa-3'

60

212

CSN3

AY380229

f 5'-atttatggccattccaccaa-3'
r 5'-gatctcaggtgggctctcaa-3'

60

166

По данным M. Rijnkels с соавт., расстояние между генами CSN1S1 и CSN3 у КРС — примерно 250 т.п.н (4). Размер вставки BAC-клонов в геномной библиотеке КРС CHORI-240 Сегмент I составляет в среднем 180 т.п.н. и варьирует от 100 до 270 т.п.н. (http://bacpac.chori.org/bovine240.htm). Проведенная нами рестрикция ДНК-клонов CH240-130F23 и CH240-035O12 позволила установить размеры вставки — соответственно 263 и 265 т.п.н. То есть клоны CH240-130F23 и CH240-035O12  включают все кодирующие последовательности кластера и около 15 т.п.н. 5'-фланкирующей области. Вероятно, предполагаемый локус-контролирующий район (LCR) кластера может быть обнаружен в пределах клона CH240-130F23, поскольку такого рода последовательности обычно расположены в 5'-фланкирующих участках на расстоянии до 35 т.п.н. от стартового кодона дистального гена (8).

 2. Результаты полимеразной цепной реакции (ПЦР) с использованием праймеров, специфических для казеиновых генов крупного рогатого скота

Клон

CSN1S1

CSN2

STATH

CSN1S2

CSN3

CH240-046B08

-

-

-

-

-

CH240-035O12

+

+

+

+

+

CH240-115O19

-

+

+

+

+

CH240-130F23

+

+

+

+

+

CH240-124F17

-

-

-

-

-

CH240-126C05

-

-

-

-

-

CH240-258E02

-

-

-

-

-

CH240-200N21

-

+

+

+

+

CH240-254P04

-

-

-

-

-

CH240-260O08

-

-

-

-

-

CH240-274P22

-

+

+

+

+

CH240-270N05

-

-

-

-

-

CH240-250M04

-

+

+

+

+

CH240-262B19

-

-

-

-

-

CH240-200L09

-

-

-

-

-

CH240-233L10

-

-

-

-

-

CH240-215M02

-

-

-

-

-

Следовательно, полученный контиг содержит не только все известные гены казеинового кластера КРС, но и значительную часть 3'-фланкирующей области.
Согласно имеющимся сведениям о геноме КРС, гены STATH и CSN1S2 расположены в пределах контига NW_936323 соответственно в положениях 821-1090 и 26595-38541 п.н., в то время как гены CSN2 и CSN1S1 — в контиге NW_973412 в положениях 418 544-426 774 и 445 522-463 059 п.н.; информация о локализации гена CSN3 отсутствует (http://www.ncbi.nlm.nih.gov/genome/guide/cow/index.html). Таким образом, расстояние между генами STATH и CSN1S2 составляет 25505 п.н., между генами CSN2 и CSN1S1 — 18748 п.н. (рис.). На основании известного размера вставки в клонах библиотеки CHORI-240 и приблизительной оценки расстояния между генами CSN1S1 и CSN3 в 200 т.п.н. (4) можно заключить, что представленный в работе контиг содержит до 70 т.п.н. 3'-фланкирующей области. Максимальное покрытие контига (½7) наблюдается в центральной и 3'-дистальной части кластера (см. рис.).

Фомичев .jpg

Контиг BAC-клонов из библиотеки CHORI-240, включающий гены CSN1S1, CSN2, STATH, CSN1S2 и CSN3. Геномные BAC-клоны: 1 — CH240-035O12, 2 — CH240-130F23, 3 — CH240-115O19, 4 — CH240-200N21, 5 — CH240-274P22, 6 — CH240-250M04.

Итак, посредством скрининга гридированной BAC-библиотеки CHORI-240, содержащей 6,1 геномного эквивалента крупного рогатого скота, с использованием в качестве ДНК-зондов фрагментов генов CSN1S1 и CSN3 выявлены 17 протяженных геномных клонов со средним размером вставки 180 т.п.н. Методом полимеразной цепной реакции с праймерами, специфическими для генов, входящих в состав кластера, показано, что клоны CH240-130F23 и CH240-035O12 содержат гены CSN1S1, CSN1S2, CSN2, STATH и CSN3 и еще пять BAC-клонов содержат гены CSN2, STATH, CSN1S2 и CSN3.  То есть все известные гены кластера представлены в контиге из семи полученных геномных клонов.

Л И Т Е Р А Т У Р А

  1. R i j n k e l s  M.,  M e e r s h o e k  E.,  d e  B o e r  H.A. e.a. Physical map and localization of the human casein gene locus. Mam. Genome, 1997, 8(4): 285-286.
  2. R i j n k e l s  M.,  M e e r s h o e k  E.,  d e  B o e r  H.A. e.a. Structure and expression of the mouse casein gene locus. Mam. Genome, 1997, 8(1): 9-15.
  3. R i j n k e l s  M.,  K o o i m a n  P.M.,  d e  B o e r  H.A. e.a. Organization of the bovine casein gene locus. Mam. Genome, 1997, 8(2): 148-152.
  4. R i j n k e l s  M.,  E l n i t s k i  L.,  M i l l e r  W. e.a. Multispecies comparative analysis of a mammalian-specific genomic domain encoding secretory proteins. Genomics, 2003, 82(4): 417-432.
  5. M i l e n k o v i c  D.,  M a r t i n  P.,  G u e r i n  G. e.a. A specific pattern of splicing for the horse alphaS1-Casein mRNA and partial genomic characterization of the relevant locus. Gen., Sel., Evol., 2002, 34(4): 509-519.
  6. F u j i w a r a  Y.,  M i w a   M.,  N o g a m i  M. e.a. Genomic organization and chromosomal localization of the human casein gene family. Hum. Genet., 1997, 99(3): 368-373.
  7. P a u l o i n  A.,  R o g e l - G a i l l a r d  C.,  P i u m i  F. e.a. Structure of the rabbit alphas1- and beta-casein gene cluster, assignment to chromosome 15 and expression of the alphas1-casein gene in HC11 cells. Gene, 2002, 283(1-2): 155-162.
  8. L i  Q.,  H a r j u  S.,  P e t e r s o n  K.R. Locus control regions: coming of age at a decade plus. Trends in Genetics, 1999, 15(10): 403-408.

ГНУ ВПО Всероссийский НИИ генетики и разведения сельскохозяйственных животных Россельхозакадемии,
196601 г. С.-Петербург—Пушкин, Московское ш., 55а,
e-mail: kiril@smtp.ru;
Department of Molecular and Biometrical Techniques,
Museum and Institute of Zoology,
Polish Academy of Sciences,
00-679 Warszawa, Wilcza Street 64,Poland,
e-mail: tmalewski@miiz.waw.pl;
Department of Animal Genetics, University of Warmia and Mazury in Olsztyn,
10-719 Olsztyn, Michala Oczapowskiego Street 5, Poland,
e-mail: stachel@uwm.edu.pl

Поступила в редакцию 29 мая 2007 года

CONSTRUCTION OF THE CONTIGUUM OF GENOMIC CLONES OF CASEIN GENES CLUSTER IN CATTLE

K.A. Fomichev, T. Malevski, S. Kaminski, A.L. Sazanova, A.A. Sazanov

S u m m a r y

The authors constructed the contiguum of cattle casein genes cluster in the form of overlapping BAC-clones. By means of screening gridded BAC-library CHORI-240 including 6.1 of genome equivalent KPC with using as DNA-sonde of genes fragments CSN1S1 and CSN3 the 17 long genome clones were revealed with average size of insertion of 180 kb. By the PCR method with primers specified for cluster genes it was shown that the clones CH240-130F23 and CH240-035O12 contain the genes CSN1S1, CSN1S2, CSN2, STATH and CSN3 and else five BAC-clones contain the genes CSN2, STATH, CSN1S2 and CSN3. That is all known cluster genes are presented in contiguum from seven obtained genomic clones