УДК 636.2:636.085.12:591.111

ЕСТЕСТВЕННАЯ РЕЗИСТЕНТНОСТЬ ТЕЛОЧЕК ПРИ СКАРМЛИВАНИИ ОБЫЧНОГО И СЕЛЕНИЗИРОВАННОГО ТОПИНАМБУРА

Е.В. КРАПИВИНА1, М.В. ИГНАТЕНКО1, Д.В. ИВАНОВ1, Н.А. ГОЛУБКИНА2, В.Н. БОГАЧЕВ3

Исследовали влияние скармливания обычного и селенизированного топинамбура на естественную резистентность телочек черно-пестрой породы. Показано, что обе добавки оказывают антистрессорное действие на организм животного после вакцинации, способствуют повышению реактивности лимфоцитарной системы и увеличению адаптационного резерва кислородозависимых механизмов микробицидности нейтрофилов. Включение в рацион селенизированного топинамбура вызывает повышение числа эритроцитов и обеспечивает стимуляцию нейтрофильного гранулоцитопоэза.

Ключевые слова: топинамбур, селен, естественная резистентность, крупный рогатый скот.

 

В настоящее время разработано большое число биологических добавок, восполняющих недостаток отдельных элементов в рационе. Особое место среди добавок, обладающих антиоксидантными и адаптогенными свойствами, принадлежит соединениям селена. Для Брянской области характерен «субоптимальный» статус по селену с содержанием его в крови у человека 60-80 % (70-90 мкг/л) от физиологического оптимума (1). При недостатке этого элемента в организме активизируется перекисное окисление липидов, в частности полиненасыщенных жирных кислот, снижается текучесть мембран и их прочность. Основная причина развивающейся патологии заключается в том, что селен входит в состав селеносодержащей глутатионпероксидазы — универсального антиоксиданта, защищающего от перекисного окисления как мембранные, так и немембранные структуры клеток (2).

Естественная резистентность представляет собой совокупность механизмов, обеспечивающих на неспецифической уровне элиминацию из организма чужеродной генетической информации или ликвидацию последствий ее воздействия. Между устойчивостью организма к заболеваниям и активностью фагоцитоза существует строгий параллелизм (3). Установлено, что дефицит селена в рационе крупного рогатого скота приводит к оксидативному поражению ферментов нейтрофилов с последующим нарушением метаболической и бактерицидной активности клеток. В процессе фагоцитоза нейтрофилы продуцируют меньше гидроксильных радикалов, снижается способность этих клеток к восстановлению тетразолия (4).

Из пищевых источников селена преимуществом обладают органические формы (селеносодержащие аминокислоты, например селенометионин) (5). Некоторые культуры, в частности топинамбур, можно обогащать селеном, используя селеносодержащие удобрения (6).

Цель настоящей работы заключалась в изучении влияния скармливания обычного и селенизированного топинамбура на естественную резистентность у телочек.

Методика. Научно-хозяйственный опыт проводили во ФГУП Учхоз «Кокино» (Выгоничский р-н, Брянская обл.) на телочках черно-пестрой породы. Кормовые добавки из сухих клубней обычного (45 мкг селена в 1 кг сухого вещества) и селенизированного (500 мкг селена в 1 кг сухого вещества) топинамбура были предоставлены ООО «Агротерра» (Россия). Содержание селена в кормах, входящих в рацион животных, определяли согласно методическим указаниям (7).

По принципу аналогов сформировали три группы телочек 5-не-дельного возраста по 6 гол. в каждой. Средняя живая масса животных составляла 57,60±1,44 кг. Телочки I (контрольной) группы получали основной рацион, сбалансированный по питательным веществам в соответствии с общепринятыми нормами (8), в состав основного рациона животных II и III (опытных) групп были включены добавки соответственно обычного и селенизированного топинамбура (1 г/кг живой массы). Добавки растворяли в молоке или воде в утреннее кормление. Условия содержания телочек соответствовали ветеринарно-зоогигиеническим требованиям. Опыт проводили в весенне-летний период в течение 37 сут. Через 8 сут после начала опыта всех животных вакцинировали, а затем ревакцинировали против трихофитоза крупного рогатого скота с использованием вакцины ЛТФ-130 (ФГУП «Ставропольская биофабрика», Россия).

Индивидуальное взвешивание проводили перед началом и по окончании опыта. Образцы крови для исследований брали из яремной вены утром до кормления перед началом опыта, на 7-е, 21-е и 37-е сут. Лейкоциты и эритроциты в крови подсчитывали в камере Горяева, содержание гемоглобина определяли гемоглобин-цианидным методом (9), лейкограмму анализировали в мазках, окрашенных по Романовскому-Гимзе. Фагоцитарный показатель (ФП) рассчитывали по доле нейтрофилов, способных к поглощению частиц латекса, фагоцитарный индекс (ФИ) — как среднее число частиц латекса, поглощенных одним активным нейтрофилом, фагоцитарное число (ФЧ) — как среднее число частиц латекса, приходящееся на один нейтрофил, абсолютный фагоцитоз крови (АФ) — как общее число частиц латекса, поглощенных нейтрофилами в 1 л крови (10). Функционально-метаболическую кислородозависимую активность нейтрофилов оценивали по содержанию нейтрофилов, способных восстанавливать нитросиний тетразолий (НСТ-позитивных) (11, 12). Индекс активации нейтрофилов (ИАН) вычисляли согласно инструкции по использованию набора «НСТ-тест» («Риакомплекс», Россия). Поглотительную способность нейтрофилов (ФП, ФИ, АФ) и активность их оксидазных систем (НСТ, ИАН) оценивали в двух состояниях: базовом (в свежевзятой крови, стабилизированной гепарином) и стимулированном (после внесения в пробы крови зимозана, что позволяло смоделировать условия антигенного воздействия и охарактеризовать адаптационные резервы поглотительной и микробицидной способности нейтрофильных гранулоцитов) (13). Показатель резерва оксидазной способности нейтрофилов периферической крови (ПР) и коэффициент их метаболической активации (К) рассчитывали по формулам, предложенным И.А. Пахмутовым и М.С. Ульяновой (14).

Полученные результаты обрабатывали статистически (15). В качестве физиологической нормы принимали интервалы соответствующих показателей, приведенные в литературе (9, 16, 17).

Результаты. Содержание селена в молоке, входящем в рацион телочек, составляло 17 мкг/л, в концентрированных кормах и сене — менее 0,1 мг/кг сухого вещества, что было ниже нормативных значений, находящихся в интервале 100-500 мкг/кг сухого вещества рациона (18).

Перед началом опыта число эритроцитов в крови у животных соответствовало физиологической норме и существенно не различалось у телочек подопытных групп. В остальные периоды исследования этот показатель у животных III группы был достоверно выше, чем у контрольных (табл. 1). Содержание гемоглобина в крови у всех телочек на протяжении опыта соответствовало физиологической норме.

Число лейкоцитов у животных всех групп несколько превышало норму только через 37 сут после начала опыта, что было обусловлено предшествующей вакцинацией и ревакцинацией против трихофитии. Число эозинофилов на протяжении исследования было близко к минимальным значениям физиологической нормы, за исключением последнего периода, когда у телочек, получавших обычный и селенизированный топинамбур, этот показатель увеличился соответственно на 210,0 и 140,0 % по сравнению с контролем. Следовательно, скармливание топинамбура способствовало повышению содержания эозинофилов в крови у телочек, что косвенно свидетельствует о снижении активности коры надпочечников, обусловленном стрессом (см. табл. 1).

1. Гематологические показатели крови у телочек черно-пестрой породы в разные периоды опыта в зависимости от наличия в рационе добавок топинамбура (M±m, Выгоничский р-н, Брянская обл.)

Показатель

Груп-
па

Перед началом опыта

После начала опыта, сут

7-е

21-е

37-е

Эритроциты, 1012

I

8,86±0,34

9,05±0,29

7,18±0,73

8,33±0,70

II

8,69±0,55

9,64±0,31

7,92±0,31

7,64±0,52

III

9,35±0,59

 11,06±0,68*

9,72±0,88*

 10,83±0,64*

Гемоглобин, г/л

I

120,00±6,25

114,83±4,74

106,28±6,24

115,03±4,76

II

128,08±3,44

122,33±4,38

111,39±4,94^

111,43±3,006^

III

121,08±8,19

123,33±7,51

121,10±10,65

120,56±6,29

Лейкоциты, 109 г/л

I

11,65±2,05

8,11±0,64

7,89±0,50

10,05±1,21

II

8,03±0,82

10,41±1,20

8,20±1,09

12,14±1,20

III

7,69±1,03

8,18±1,31

8,66±0,43

10,01±0,87

Палочко-
ядерные нейтрофилы, %

I

1,75±1,09

0

0,33±0,12

0

II

0,88±0,29

0,01±0,01

0,08±0,05

0,06±0,05

III

0,64±0,10

0,12±0,08

0,38±0,08

0,07±0,05

Сегменто-
ядерные нейтрофилы, %

I

24,64±4,31

17,33±3,95

16,25±3,25

11,92±2,82

II

19,95±2,15

20,53±3,99

13,36±2,14

18,21±3,14

III

16,05±2,15

20,53±3,85

12,12±2,17

12,70±2,71

Эозинофилы, %

I

0,26±0,09

0,36±0,14

0,20±0,08

0,10±0,04

II

0,31±0,08

0,20±0,08

0,15±0,07

0,31±0,10*

III

0,36±0,06

0,18±0,05

0,17±0,09

0,24±0,04*

Базофилы,
%

I

0,51±0,14

0,47±0,13

0,38±0,11

0,65±0,15

II

0,31±0,07

0,45±0,12

0,50±0,13

0,30±0,11

III

0,78±0,16

0,46±0,22

0,61±0,16

0,97±0,30

Моноциты,
%

I

2,51±0,28

6,29±0,70

1,38±0,35

2,14±0,25

II

3,83±0,65

5,39±1,19

2,15±0,76

2,28±0,35

III

 4,18±0,46*

4,46±0,95

3,07±0,24

2,33±0,31

Лимфоциты, %

I

70,32±5,08

75,54±3,83

81,47±3,14

84,94±2,96

II

74,80±2,37

73,42±4,02

83,73±2,66

78,84±2,73

III

77,87±2,09

73,98±3,52

84,36±2,41

82,64±2,47

П р и м е ч а н и е. Описание групп по составу рациона см. в разделе «Методика».
* Р < 0,05 по отношению к показателям у животных I группы.

 
Доля базофилов соответствовала норме во все периоды исследования без достоверно значимых различий у животных подопытных групп. Содержание моноцитов перед началом опыта в крови у телочек III группы было достоверно выше (на 66,53 %) по сравнению с контролем. В остальные периоды значения этого показателя постепенно снижались. Через 7 сут у животных I группы отмечали повышение числа моноцитов на 150,60 %, после вакцинации их содержание уменьшалось на 78,06 %. В крови у животных, получавших обычный топинамбур, динамика изменений этого показателя была аналогична таковой у особей контрольной группы.

Относительное число лимфоцитов у телочек подопытных групп перед началом опыта соответствовало наиболее высоким значениям физиологической нормы. На 7-е сут у контрольных животных содержание этих клеток повысилось на 7,42 %, у телочек II и III групп — снизилось соответственно на 1,84 и 5,00 %. После вакцинации доля лимфоцитов у всех животных превышала нормативные значения. При этом наиболее интенсивный рост числа лимфоцитов отмечали в крови у телочек, получавших топинамбур, что свидетельствует о положительном влиянии этой добавки на реактивность лимфоцитарной системы (см. табл. 1).

Перед началом опыта число нейтрофилов у животных II и III групп было более чем в 2 раза ниже по сравнению с контролем (табл. 2). Через 7 сут содержание нейтрофилов в крови у телочек I группы понижалось на 57,02 %, у животных II и III групп — повышалось соответственно на 29,76 и 47,79 %. Последующие вакцинации вызывали практически одинаковое снижение числа этих клеток у особей подопытных групп.

2. Поглотительная способность нейтрофилов у телочек черно-пестрой породы в разные периоды опыта в зависимости от наличия в рационе добавок топинамбура (M±m, Выгоничский р-н, Брянская обл.)

Показатель

Группа

Перед началом опыта

После начала опыта, сут

7-е

21-е

37-е

Нейтрофилы, 109/л

I

3,56±1,24

1,53±0,44

1,36±0,31

1,38±0,54

II

1,68±0,30

2,18±0,54

1,17±0,32

2,23±0,43

III

1,36±0,33

2,01±0,70

1,12±0,24

1,46±0,35

ФПбаз., %

I

8,67±1,60

40,25±3,13

41,58±6,11

51,11±5,31

II

12,53±1,54

40,86±6,90

47,00±4,60

56,08±7,40

III

14,83±2,62

33,86±2,52

43,70±2,70

57,25±3,27

ФПстим., %

I

8,83±1,61

19,42±2,07

40,25±4,21

42,11±4,87

II

8,58±1,03

25,50±4,34

39,58±8,34

52,97±6,03

III

  14,72±2,13*

26,20±3,80

27,45±5,17

  56,53±3,41*

ФИбаз., усл. ед.

I

5,02±0,81

6,55±0,28

6,32±0,49

7,16±0,38

II

5,97±0,41

5,91±0,53

6,92±0,49

7,00±0,55

III

4,79±0,67

5,85±0,33

7,11±0,59

6,12±0,31

ФИстим., усл. ед.

I

4,49±0,52

5,07±0,53

6,01±0,48

5,60±0,55

II

4,60±0,55

4,95±0,41

5,96±0,84

5,57±0,51

III

4,78±0,34

6,43±0,55

6,37±0,44

4,91±0,27

АФбаз., 109/л

I

0,97±0,15

3,76±1,01

3,99±1,22

5,08±1,78

II

1,35±0,34

4,06±0,52

3,22±0,53

8,04±1,60

III

1,14±0,40

4,14±1,44

3,40±0,75

5,09±1,29

АФстим., 109/л

I

1,03±0,23

1,22±0,25

3,49±0,96

4,11±2,02

II

0,77±0,27

2,61±0,63

2,40±0,77

5,82±0,93

III

0,93±0,24

 2,71±0,63*

2,26±0,77

4,57±1,39

ФЧбаз., усл. ед.

I

0,51±0,15

2,65±0,25

2,64±0,48

3,75±0,58

II

0,74±0,10

2,55±0,54

3,36±0,46

4,14±0,65

III

0,91±0,28

2,03±0,17

3,17±0,43

3,47±0,17

ФЧстим., усл. ед.

I

0,41±0,11

0,98±0,16

2,54±0,45

2,45±0,42

II

0,40±0,07

1,33±0,28

2,34±0,64

3,09±0,51

III

0,78±0,13*

 1,80±0,34*

1,74±0,31

2,81±0,29

П р и м е ч а н и е. То же, что в таблице 1. ФПбаз. и ФПстим. — фагоцитарный показатель соответственно в базовых и стимулированных условиях, ФИбаз. и ФИстим. — фагоцитарный индекс в базовых и стимулированных условиях, АФбаз. и АФстим. — абсолютный фагоцитоз крови в базовых и стимулированных условиях, ФЧбаз. и ФЧстим. — фагоцитарное число в базовых и стимулированных условиях.

Доля палочкоядерных нейтрофилов во все периоды исследования была существенно ниже нормативных значений, находящихся в интервале 4-8 %, что указывает на низкую активность гранулоцитарного нейтрофильного ростка костного мозга. Скармливание селенизированного топинамбура оказывало стимулирующее воздействие на нейтрофильный гранулоцитопоэз, о чем свидетельствует наличие палочкоядерных нейтрофилов в крови у телочек III группы на 7-е и 37-е сут при полном их отсутствии у животных I группы и более высокое содержание этих клеток у животных III группы через 21 сут по сравнению с телочками, получавшими обычный топинамбур.

Содержание сегментоядерных нейтрофилов в крови у животных I  и II групп перед началом опыта соответствовало норме. У телочек III группы отмечали пониженное (соответственно на 34,86 и 19,55 %) значение этого показателя по сравнению с животными первых двух групп. Через 7 сут была выявлена тенденция к снижению (на 29,67 %) числа сегментоядерных нейтрофилов у телочек контрольной группы и повышению  у животных II и III групп (на 2,91 и 27,91 % по сравнению с предшествующим периодом исследований). На 21-е сут отмечено снижение доли этих клеток у животных I, II и III групп соответственно на 6,23; 34,92 и 40,96 %, что было связано со значительной активацией лимфоцитарной системы в ответ на введение в организм антигена. На 37-е сут содержание сегментоядерных нейтрофилов в крови у телочек II группы увеличилось на 36,30 %.

Значения фагоцитарного показателя в базовых условиях у животных всех подопытных групп перед началом опыта соответствовали физиологической норме (см. табл. 2). Внесение в пробы крови зимозана не вызвало увеличения относительного числа нейтрофилов, способных поглощать частицы латекса, что свидетельствует об отсутствии адаптационного резерва этого защитного механизма у телочек как перед началом опыта, так и во все последующие периоды исследования. При этом значение ФП у телочек III группы на 37-е сут было достоверно выше (на 34,24 %), чем у контрольных.

Фагоцитарный индекс нейтрофилов в базовых условиях находился в пределах нормы с тенденцией к повышению в поствакцинальный период без достоверно значимых различий между телочками подопытных групп. После внесения в пробы крови зимозана ФИ существенно не изменялся. Скармливание добавок топинамбура не оказывало существенного влияния на абсолютный фагоцитоз в базовых условиях. Внесение в пробы крови зимозана не приводило к достоверно значимому повышению АФ у телочек как в контрольной, так и в опытных группах. При этом у животных, получавших в течение 7 сут селенизированный топинамбур, значение АФ в стимулированных условиях было на 122,13 % выше, чем в контроле. Фагоцитарное число нейтрофилов в базовых условиях у всех животных в начале опыта было ниже нормативных значений, но с возрастом увеличивалось. При внесения в пробы крови зимозана в начале опыта у телочек III группы ФЧ было на 90,24 и 95,00 % выше по сравнению с животными I и II групп. Это преимущество сохранилось и через 7 сут после начала опыта (см. табл. 2).

Относительное число НСТ-позитивных нейтрофилов в базовых условиях у телочек всех групп существенно не различалось и превышало нормативные значения перед началом опыта, через 7 и 21 сут (табл. 3), что указывает на присутствие в этот период в организме подопытных животных факторов, стимулирующих активность кислородозависимых систем микробицидности нейтрофилов. Через 37 сут содержание НСТ-позитивных нейтрофилов в базовых условиях у всех животных соответствовало нормативным значениям. Внесение зимозана в пробы крови телочек контрольной группы обусловливало повышение числа НСТ-позитивных нейтрофилов, что свидетельствует о наличии адаптационного резерва кислородозависимой микробицидности нейтрофилов крови. У животных I группы этот резерв был наибольшим через 37 сут после начала опыта (относительное содержание НСТ-позитивных нейтрофилов в 5,25 раз выше, чем в базовых условиях). Через 7 сут у телочек, в рацион которых входил обычный топинамбур, было выявлено снижение числа НСТ-позитивных нейтрофилов при стимуляции их зимозаном (на 32,25 % по сравнению с контролем). При этом на 37-е сут эксперимента содержание таких нейтрофилов у животных II группы было на 32,79 % выше по сравнению с контролем. Скармливание телочкам селенизированного топинамбура не оказывало существенного влияния на число НСТ-позитивных нейтрофилов в условиях стимуляции зимозаном на 7-е и 21-е сут, но привело к увеличению числа этих клеток через 37 сут (на 22,66 % по сравнению с контролем).

3. Микробицидная активность нейтрофилов у телочек черно-пестрой  породы в разные периоды опыта в зависимости от наличия в рационе добавок топинамбура (M±m, Выгоничский р-н, Брянская обл.)

Показатель

Группа

Перед началом опыта

После начала опыта, сут

7-е

21-е

37-е

НСТбаз., %

I

27,95±4,09

17,64±2,55

23,25±4,58

7,67±2,12

II

29,81±2,92

15,95±2,89

27,11±1,96

7,42±1,45

III

25,61±1,52

15,28±2,27

29,83±4,22

6,33±1,58

НСТстим., %

I

38,61±2,89

39,61±2,92

40,95±3,58

40,29±1,51

II

35,14±1,87

26,83±4,25*

36,86±4,83

53,50±3,09*

III

33,31±3,18

30,42±4,33

41,89±4,51

49,42±3,74*

ИАНбаз.

I

0,45±0,07

0,27±0,05

0,35±0,06

0,11±0,04

II

0,46±0,05

0,28±0,05

0,40±0,04

0,10±0,02

III

0,42±0,03

0,24±0,04

0,47±0,09

0,09±0,02

ИАНстим.

I

0,66±0,05

0,90±0,08

0,78±0,05

0,73±0,04

II

0,61±0,04

0,56±0,10*

0,73±0,10

1,05±0,08*

III

0,60±0,07

0,60±0,07*

0,84±0,11

0,90±0,06*

К

I

0,28±0,10

0,52±0,09

0,44±0,09

0,81±0,05

II

0,14±0,09

0,32±0,12

0,17±0,15

0,86±0,03

III

0,20±0,07

0,37±0,15

0,30±0,06

0,87±0,04

ПР

I

1,62±0,30

2,66±0,53

2,01±0,26

9,51±3,69

II

1,24±0,12

2,31±0,90

1,38±0,16

9,92±2,45

III

1,32±0,14

2,53±0,70

1,49±0,14

9,85±1,54

П р и м е ч а н и е. То же, что в таблице 1. НСТбаз. и НСТстим. — нейтрофилы, способные восстанавливать нитросиний тетразолий соответственно в базовых и стимулированных условиях, ИАНбаз. и ИАНстим. — индекс активации нейтрофилов в базовых и стимулированных условиях, К — коэффициент метаболической активации нейтрофилов, ПР — показатель резерва оксидазной способности нейтрофилов крови.

Индекс активации нейтрофилов в базовых условиях у телочек всех групп перед опытом, а также на 7-е и 21-е сут превышал нормативные значения, через 37 сут — соответствовал им. Скармливание топинамбура не оказало существенного влияния на величину этого показателя. После внесения в пробы крови зимозана ИАН у животных всех групп повысился по отношению к его величине в базовых условиях. Скармливание телочкам обычного и селенизированного топинамбура в течение 7 сут приводило к снижению ИАН при стимуляции зимозаном соответственно на 37,78 и 33,33 % по сравнению с контролем. Через 37 сут ИАН после стимуляции зимозаном у телочек II и III групп был соответственно на 43,84 и 23,29 % выше, чем у животных I группы.

Коэффициент метаболической активации нейтрофилов и показатель резерва оксидазной способности нейтрофилов крови у подопытных животных перед началом опыта, на 7-е и 21-е сут были значительно ниже нормативных значении, на 37-е сут — соответствовали им, причем у телочек II и III группы значения этих показателей были выше, чем в контрольной группе (см. табл. 3).

Таким образом, скармливание телочкам обычного и селенизированного топинамбура оказывает антистрессорное действие после вакцинаций, способствует повышению реактивности лимфоцитарной системы у животных при вакцинации, вызывает достоверное увеличение адаптационного резерва кислородозависимых механизмов микробицидности нейтрофилов за счет увеличения числа НСТ-позитивных нейтрофилов и стимуляции метаболической активации оксидазных систем. Введение в рацион селенизированного топинамбура способствует увеличению содержания в крови эритроцитов, стабилизации числа моноцитов и обеспечивает стимуляцию нейтрофильного гранулоцитопоэза с усилением его реактивности. При этом повышается способность нейтрофилов поглощать чужеродный материал.


Л И Т Е Р А Т У Р А

1. Г о л у б к и н а  Н.А. Потребление селена жителями Брянской области в районах радиоактивного заражения. Вопр. питания, 1994, 4: 3-5.
2. Г а л о ч к и н  В.А.,  Б л и н о х в а т о в  А.Ф.,  Б о р я е в  Г.И. и др. Селенопиран — новый высокоэффективный антиоксидант. В сб.: V Международ. конф. «Биоантиоксиданты». М., 1998: 32.
3. Ч е р н у ш е н к о  Е.Ф.,  К о г о с о в а  Л.С. Иммунологические исследования в клинике. Киев, 1978.
4. B o y n e  R.,  A r t h u r  J.R. Alterations of neutrophil function in selenium-deficient cattle. J. Comp. Pathol., 1979, 89: 151-157.
5. Г м о ш и н с к и й  И.В.,  М а з о  В.К. Минеральные вещества в питании человека. Селен: всасывание и биодоступность. Вопр. питания, 2006, 75: 15-21.
6. Г о л у б к и н а  Н.А. Перспективы использования селена в растениеводстве. Вест. РАСХН, 2006, 1: 49-51.
7. Т у т е л ь я н  В.А.,  Х о т и м ч е н к о  С.А.,  Г о л у б к и н а  Н.А. Определение селена в продуктах питания. Методические указания. М., 1995.
8. Нормы и рационы кормления сельскохозяйственных животных. Справочное пособие. Изд. перераб. и доп. /Под ред. А.П. Калашникова, Н.И. Клейменова, В.Н. Баканова и др. М., 2003.
9. К о н д р а х и н  И.П.,  А р х и п о в  А.В.,  Л е в ч е н к о  В.И. и др. Методы ветеринарно-клинической лабораторной диагностики. Справочник /Под ред. И.П. Кондрахина. М., 2004.
10. Ч у м а ч е н к о  В.Е.,  В ы с о ц к и й  А.М.,  С е р д ю к  Н.А. и др. Определение естественной резистентности и обмена веществ у сельскохозяйственных животных. Киев, 1990.
11. Ш у б и ч  М.Г.,  М е д н и к о в а  В.Г. NBT-тест у детей в норме и при гнойно-бактериальных инфекциях. Лаб. дело, 1978, 1: 663-666.
12. Ш у б и ч  М.Г.,  Н е с т е р о в а  И.В.,  С т а р ч е н к о  В.М. Тест с нитросиним тетразолием в оценке иммунологического статуса детей с гнойно-септическими заболеваниями. Лаб. дело, 1980, 7: 342-344.
13. Х а и т о в  Р.Б.,  П и н е г и н  Б.В.,  И с т а м о в  Х.И. Экологическая иммунология. М., 1995.
14. П а х м у т о в  И.А.,  У л ь я н о в а  М.С. Оценка функциональной активности нейтрофилов крови животных. Ветеринария, 1984, 3: 68-69.
15. И в а н о в  В.П.,  К р а п и в и н  И.А. Программа для статистической обработки результатов зоотехнических, физиологических и биохимических исследований. В сб.: Новые формы и методы обучения студентов, ч. 2. Кострома, 1994: 90-91.
16. Ч у м а ч е н к о  В.Е.,  В ы с о ц к и й  А.М.,  С е р д ю к  Н.А. и др. Определение естественной резистентности и обмена веществ у сельскохозяйственных животных. Киев, 1990.
17. К а р п у т ь  И.М. Гематологический атлас сельскохозяйственных животных. Минск, 1986.
18. Г а л о ч к и н  В.А.,  Г а л о ч к и н а  В.П.,  К р а п и в и н а  Е.В. и др. Неспецифическая резистентность животных. Методическое пособие. Боровск, 2007.

 

NATURAL RESISTANCE IN HEIFERS AFTER FEEDING BY USUAL TOPINAMBOUR AND WITH SELENIUM

E.V. Krapivina1, M.V. Ignatenko1, D.V. Ivanov1, N.A. Golubkina2, V.N. Bogachev3

The authors studied the effect of feeding by usual topinambour and with selenium on natural resistance in heifers of the Black-and-White breed. It was shown that both additions cause the antistress action on animal organism after vaccination, promote to an increasing of reactivity of lymphocytic system and a rising of adaptive reserve of oxygen dependent mechanisms of microbicidal neutrophil. The introduction to ration of topinambour with selenium results in the raising of erythrocytes amount and ensures the stimulation of neutrophil granulocytopoiesis.

Key words: topinambur, selen, natural resistance, calf.

1ФГОУ ВПО Брянская государственная
сельскохозяйственная академия,

243365 Брянская обл., Выгоничский р-н, с. Кокино,
e-mail: cit@bcsha.bryansk.ru, krapivina_e_v@mail.ru;
2Институт питания РАМН,
109240 г. Москва, Устьинский пр., 2/14,
e-mail: segolubkina@rambler.ru;
3ООО «Медицина и здоровье»,
Ассоциация «Топинамбур»,

111394 г. Москва, ул. Садовническая, 33

Поступила в редакцию
29 июля 2008 года

 

Оформление электронного оттиска

назад в начало